روستا, پری, محیط, اردشیر, روستائی علی مهر, محمد. (1393). اثر سطوح آنتی بیوتیک های مختلف روی کیفیت اسپرم قوچ در طول ذخیره سازی در 5 درجه سانتی گراد. تحقیقات تولیدات دامی, 3(2), 61-68.
پری روستا; اردشیر محیط; محمد روستائی علی مهر. "اثر سطوح آنتی بیوتیک های مختلف روی کیفیت اسپرم قوچ در طول ذخیره سازی در 5 درجه سانتی گراد". تحقیقات تولیدات دامی, 3, 2, 1393, 61-68.
روستا, پری, محیط, اردشیر, روستائی علی مهر, محمد. (1393). 'اثر سطوح آنتی بیوتیک های مختلف روی کیفیت اسپرم قوچ در طول ذخیره سازی در 5 درجه سانتی گراد', تحقیقات تولیدات دامی, 3(2), pp. 61-68.
روستا, پری, محیط, اردشیر, روستائی علی مهر, محمد. اثر سطوح آنتی بیوتیک های مختلف روی کیفیت اسپرم قوچ در طول ذخیره سازی در 5 درجه سانتی گراد. تحقیقات تولیدات دامی, 1393; 3(2): 61-68.
اثر سطوح آنتی بیوتیک های مختلف روی کیفیت اسپرم قوچ در طول ذخیره سازی در 5 درجه سانتی گراد
1دانش آموخته کارشناسی ارشد، گروه علوم دامی، دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان
2استادیار گروه علوم دامی، دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان
3دانشیار گروه علوم دامی، دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان
چکیده
به منظور مطالعهی اثر آنتی بیوتیکهای مختلف روی کیفیت اسپرم قوچ، یک آزمایش فاکتوریل23 در قالب بلوکهای کامل تصادفی با 2 بلوک و 4 مشاهده در هر واحد آزمایشی انجام شد. عوامل شامل سه آنتی بیوتیک لینکومایسین (L)، جنتامایسین (G) و آمپیسیلین (A) بودند که هر یک در دو سطح صفر و به ترتیب 5، 10 و g/mlµ 5/2 رقیق کننده مورد استفاده قرار گرفتند، رقیقکننده بر پایه تریس به عنوان بلوک اول و رقیقکننده شیر پسچرخ بهعنوان بلوک دوم در نظرگرفته شد. منی از 4 راس قوچ در 8 نوبت جمع آوری شد. در هر نوبت نمونه ها تجمیع و به هشت قسمت مساوی تقسیم شدند. به هر قسمت، رقیقکنندهی متفاوت از نظر سطوح آنتیبیوتیک افزوده شد. نمونه ها با سرعت °c/min25/0 تا c° 5 سرد شدند و تا 72 ساعت در همین دما ذخیره شدند. ارزیابی اسپرم در زمانهای صفر، 24، 48 و 72 ساعت بعد از ذخیرهسازی انجام شد. اثر متقابل آنتیبیوتیکها بر درصد تحرک پیشرونده، سلامتی غشا پلاسمایی و زندهمانی اسپرم معنیدار بود (05/0>P). پس از 24، 48 و 72 ساعت ذخیرهسازی، درصد تحرک پیشرونده (19/78%، 26/66% و 52/54%)، سلامتی غشا پلاسمایی (12/85% ،12/75% و 62/62%) و زندهمانی اسپرم (12/86%، 38/78% و 62/70%) در تیمار 10l0g0a (لینکومایسین در سطح g/mlµ 10 رقیق کننده) بهطور معنیداری از سایر تیمارها بجز تیمار 0l5g0a (جنتامایسین در سطح g/mlµ 5) بیشتر بود (05/0>P). هر چند در زمان صفر، تیمار 10l0g0a بطور معنی داری از نظر خصوصیات مورد بررسی نسبت به تیمار 0l5g0a برتری داشت. از این تحقیق استنتاج میشود که استفاده از لینکومایسین در سطح g/mlµ 10 رقیقکننده، بیشترین اثر را در حفظ کیفیت اسپرم در دمای 5 درجه سانتیگراد داشته است.
Effect of different levels of antibiotics on ram spermatozoa quality during storage at 5"C
نویسندگان [English]
P. Rousta1؛ A. Mohit2؛ M. Roostaei-Ali Mehr3
1MS Graduated Student, Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Guilan
2Assistant professor, Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Guilan
3Associate professor, Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Guilan
چکیده [English]
Experiment was conducted to study the effect of different antibiotics on sperm quality of ram by a completely randomized block design using 23 factorial arrangement with 2 block and 4 observations in each experimental units. Factors include three antibiotics named Gentamycin (G), Lincomycin (L) and Ampicillin (A) that were used at two different levels including zero and, respectively 5, 10 and 2.5 μg / ml of diluents. Tris-based and skimmed milk-based diluents were considered as block1 and block2 respectively. Semen was collected from four rams in 8 times. Samples were aggregated and divided into eight equal parts. The different levels of antibiotics were added to each part. Samples temperature was reduced at a rate of 0.25° C/min to5° C and was stored at this temperature for 72 hours. Sperms evaluations were performed at 0, 24, 48 and 72 h after storage. The interactions between antibiotics on the progressive mobility, plasma membrane integrity and viability of sperm were significant (P<0.05).After 0,24,48 and 72h of storage, progressive motility(78.19%, 66.26% and 54.52%), plasma membrane integrity(85.12%,75.12% and 62.62%) and viability of sperm(86.12%,78.38% and 70.62%) in a0g0l10 (Lincomycin 10μg / ml of diluents) were significantly (P<0.05) higher than other treatments except a0g5l0 (Gentamycin 5μg / ml of diluents) at 24, 48 and 72 h after storage. However the characteristics of a0g0l10were significantly higher than a0g5l0 at time zero. From this study we concluded that using Lincomycin 10μg / ml had the most effect on quality of spermatozoa during storage at 5° C.
کلیدواژه‌ها [English]
Antibiotics, Spermatozoa, Ram, Storage
مراجع
Agarwal A. and Allamaneni S. S. 2011. Free radicals and male reproduction. Indian Medical Assocation, 109(3): 184-187.
Akhter S., Ansari M. S., Andrabi S. M., Ullah N. and Qayyum M. 2008. Effect of antibiotics in extender on bacterial and spermatozoal quality of cooled buffalo (Bubalusbubalis) bull semen. Reproduction in Domestic Animals, 43: 272–278.
Almond G. and Poolperm P. 1996. Semen contamination and choosing antibiotics. In: Proceedings of North Carolina Healthy Hogs Seminar p: 1–3.
Althouse G. C. and Lu K. G. 2005. Bacteriospermia in extended porcine semen. Theriogenology, 63: 573–584.
Althouse G. C. and Skaife P. 2010. Loomis prevalence and types of contaminant bacteria in extended, chilled equine semen. Animal Reproduction Science, 121: 224–225.
Azawi1 O. I. and Ismaeel A. 2012. Influence of addition of different antibiotics in semen diluent on viable bacterial count and spermatozoal viability of awassi ram semen. Veterinary, 52: 75-77.
Bielanski A. 2007. Disinfection procedures for controlling microorganisms in thesemen and embryos of humans and farm animals.Theriogenology, 68: 1–22.
Bjorndahle L., Sonderlund I. and Kvist U. 2003. Evaluation of the on-step eosin-nigrsinstatining technique for human sperm vitality assessment. Human Reproduction, 18: 813-816.
Brock K. 1998. Quality control for materials of animal origin used in embryo production and transfer. In: Stringfellow DA, Seidel M, editors. Manual of the International EmbryoTransfer Society. USA: IETS, Savoy, Illinois, 9-135.
Douard V., Hermier D., Magistrini M. L., Abbe C. and Blesh E. 2004. Impact of changes incomposition of storage medium on lipid content and quality of turkey spermatozoa. Theriogenology, 61: 1-13.
Fanaee H., Keshtgar S., Bahmanpour S., Kazeroni M., Ghannadi A. R. and Rostami S. 2009. Effects of α-tocopherol and A23187 on normozoosperm motility and vitality. Iranin Journal of reproductive medicine, 7 (Suppl. 2): 53.
Foote R. H. and Bratton R. W.1950. The fertility of bovin semen in extenders containing sulfanilamide, penicillin, streptomycin and polymyxin. Journal of Dairy Science, 33(8): 544-547.
Heise A., Kähn W ., Volkmann D. H., Thompson P. N. and Gerber D. 2010. Influence of seminalplasma on fertility of fresh and frozen-thawed stallion epididymal spermatozoa. Animal Reproduction Science, 118: 48-53.
Ijaz A., Laeeq A. L., Zafariqbal Q., Najibur R. and Iqbal M. 2011. Effect addition antibiotic on liveability index and viable bacterial count of lohi ram semen. Agriculture and Biology, 4: 300-302.
Jesos Luis Y., Mara A., Marco A. and Pilar S. 2010. Bacterial contamination of ram semen antibiotic sensitivities،and effect on sperm quality during storage at 15 ◦C. Animal Reproduction Science, 122 : 142–149.
Keshtgar S., Fanaei H., Bahmanpour S. F., Azad A., Ghannadi D. and Kazeroni M. 2012. In vitro effects of alpha-tocopherol on teratozoospermic semen samples. Andrologia, 44 (Suppl 1): 721-727.
Lee J., Richburg J. H., Younkin S. C. and Boekelheide K. 1997. The Fas system is a key regulator of germ cell apoptosis in the testis. Endocrinology, 138: 2081-2088.
Martnen E. A., Vazquez J. M., Roca J., Lucas X., Gil M. A., Parrilla I., Vazquez J. L. and Day N. 2001. Succesful non-surgical deep intrauterine insemination with small number of spermato- zoa in sows. Reproduction, 122: 289–296.
Mayer G. 2009. Microbiology and Immunology. Chapter 20. University of South Carolina School of Medicine, p:1-20. USA.
Poolperm P. 1999. Shelf life of semen extended with antibiotics. In: Proceedings of North Carolina Healthy Hogs Seminar.p:1–5.
Prins J. M., Weverling G. J., de-Blok K.,van-Ketel R. J. and Speelman P. 1996. Validation and nephrotooxicity of a simplified once-daily aminoglycoside dosing schedule and guidelinesfor monitoring therapy. Antimicrobial Agents Chemother, 40 (11): 2494–2499.
Salamon S. and Maxwell M. C. 2000. Storage of ram semen. Animal Reprodaction Science, 62: 77–111.
Schiewe M. 1998. General hygiene and quality control practices in a embryo production laboratory. In: Stringfellow DA, Seidel M, editors. Manual of the International Embryo Transfer Society. USA: IETS, Savoy, Illinois, 93–103.
Spízek J. and Rezanka T. 2004 Lincomycin, cultivation of producing strains and biosynthesis. Appied Microbiology and Biotechnology, 63 (5): 510–519.
Wolff H., Panhans A., Stolz W. and Meurer M. 1993. Adherence of Escherichia coli to sperm a mannose phenomenon leading to agglutination sperm and E. coli. Fertility, 60: 154–158.
Yaniz J., MartiJ I., Slivestre M. A., Folch J., Santolaria P., Alabart J. L. and Lopez-Gatius F. 2008. Effect of solid storage of sheep spermatozoa at 15 ◦C on their survival and penetrating capacity. Theriogenology, 64: 1844–1851.
ابتدای صفحه